研究成果

加藤 創一郎 ウェブサイト

査読付き論文

2024年12月21日更新、*は責任著者

2024

69. Mayumi D#, Tamaki H#, Kato S#, Igarashi K#, Lalk E, Nishikawa Y, Minagawa H, Sato T, Ono S, Kamagata Y, Sakata S. (2024) Hydrogenotrophic methanogens overwrite isotope signals of subsurface methane. Science. 386: 1372-1376. (#共同筆頭著者) [Pubmed] [プレスリリース]

68. Tabata H, Nishijima H, Yamada Y, Miyake R, Yamamoto K, Kato S, Nakanishi S. (2024) Microbial biomanufacturing using chemically synthesized non-natural sugars as the substrate. ChemBioChem. 25: e202300760. [Pubmed] [プレスリリース]

67. Islam MS, Yamamoto K, Morita N, Yumoto I, Kato S, Nakai R, Igarashi K. (2024) Complete genome sequence of Opitutales bacterium strain ASA1, isolated from soil. Microbiol. Resour. Announc. e01032-23. [Pubmed]

2023

66. Tabata H, Chikatani G, Nishijima H, Harada T, Miyake R, Kato S, Igarashi K, Mukouyama Y, Shirai S, Waki M, Hase Y, Nakanishi S. (2023) Construction of an autocatalytic reaction cycle in neutral medium for synthesis of life-sustaining sugars. Chem. Sci. 14: 13475-13484. [Pubmed] [プレスリリース]

65. Xie R, Takashino M, Igarashi K, Kitagawa W, *Kato S. (2023) Transcriptional regulation of methanol dehydrogenases in the methanotrophic bacterium Methylococcus capsulatus Bath by soluble and insoluble lanthanides. Microbes Environ. 38: ME23065. [Pubmed]

64. Watanabe M, Igarashi K, Kato S, Kamagata Y, Kitagawa W. (2023) Self-cloning of the catalase gene in environmental isolates improves their colony-forming abilities on agar media. Microbes Environ. 38: ME23006. [Pubmed]

63. Watanabe M, Igarashi K, Kato S, Kamagata Y, Kitagawa W. (2023) Genome sequences of Comamonadaceae bacteria OS-1 and OS-4, two highly H2O2-sensitive strains isolated from pond water. Microbiol. Resour. Announc. 12: e01198-22. [Pubmed]

2022

62. Huang Y, Nobu MK, Igarashi K, *Kato S. (2022) Draft genome sequence of the alkaliphilic, lithoautotrophic homoacetogen Fuchsiella alkaliacetigena Z-7100T. Microbiol Resour Announc. 11: e0047122. [Pubmed]

61. Huang Y, Nobu MK, Igarashi K, *Kato S. (2022) Draft genome sequence of the extremely haloalkaliphilic and homoacetic bacterium Natroniella acetigena Z-7937T. Microbiol. Resour. Announc. 11: e0047222. [Pubmed]

60. Watanabe M, Igarashi K, Kato S, Kamagata Y, Kitagawa W. (2022) Critical effect of H2O2 in the agar plate on the growth of laboratory and environmental strains. Microbiol. Spectr. 10: e03336-22. [Pubmed]

2021

59. Igarashi K, *Kato S.(2021) Reductive transformation of Fe(III) (oxyhydr)oxides by mesophilic homoacetogens in the genus Sporomusa. Front. Microbiol. 12: 600608. [Pubmed]

58. Watanabe M, Igarashi K, Kato S, Kamagata Y, Kitagawa W. (2021) Complete genome sequence of Alphaproteobacteria bacterium strain SO-S41, isolated from forest soil. Microbiol. Resour. Announc. 10: e0053621. [Pubmed]

57. Tanaka K, Shimakawa G, Kusama S, Harada T, Kato S, Nakanishi S. (2021) Ferrihydrite reduction by photosynthetic Synechocystis sp. PCC 6803 and its correlation with electricity generation. Front. Microbiol. 12: 650832. [Pubmed]

2020

56. *Kato S, Takashino M, Igarashi K, Kitagawa W. (2020) Isolation and genomic characterization of a proteobacterial methanotroph requiring lanthanides. Microbes Environ. 35:ME19128. [Pubmed]

55. *Kato S, Terashima M, Yama A, Sato M, Kitagawa W, Kawasaki K, Kamagata Y. (2020) Improved isolation of uncultured anaerobic bacteria using medium prepared with separate sterilization of agar and phosphate. Microbes Environ. 35: ME19060. [Pubmed]

54. *Kato S, Takashino M, Igarashi K, Mochimaru H, Mayumi D, Tamaki H. (2020) An iron corrosion-assisted H2-supplying system: A culture method for methanogens and acetogens under low H2 pressures. Sci. Rep. 10: 19124. [Pubmed]

53. Quaiyum S, Igarashi K, Narihiro T, *Kato S. (2020) Microbial community analysis of anaerobic enrichment cultures supplemented with bacterial peptidoglycan as the sole substrate. Microbes Environ. 35: ME20002. [Pubmed]

52. Igarashi K, Miyako E, *Kato S. (2020) Direct interspecies electron transfer mediated by graphene oxide-based materials. Front. Microbiol. 10:3068. [Pubmed]

51. Terashima M, Kamagata Y, *Kato S. (2020) Rapid enrichment and isolation of polyphosphate-accumulating organisms through 4’6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) staining with fluorescence-activated cell sorting (FACS). Front. Microbiol. 11:793. [Pubmed]

50. Lee JY, Haruta S, Kato S, Bernstein HC, Lindemann S, Lee DY, Fredrickson JK, Song HS. (2020) Prediction of neighbor-dependent microbial interactions from limited population data. Front. Microbiol. 10: 3049. [Pubmed]

2019

49. *Kato S, Wada K, Kitagawa W, Mayumi D, Ikarashi M, Sone T, Asano K, Kamagata Y. (2019) Conductive iron-oxides promote methanogenic acetate degradation by microbial communities in a high-temperature petroleum reservoir. Microbes Environ. 34: 95-98. [Pubmed]

48. *Kato S, Igarashi K. (2019) Enhancement of methanogenesis by electric syntrophy with biogenic iron-sulfide minerals. MicrobiologyOpen. 6: e00647. [Pubmed]

47. Tanaka K, Ishikawa M, Kaneko M, Kamiya K, Kato S, Nakanishi S. (2019) The endogenous redox rhythm is controlled by a central circadian oscillator in cyanobacterium Synechococcus elongatus PCC7942. Photosynth. Res. 142: 203-210. [Pubmed]

2018

46. *Kato S, Yamagishi A, Daimon S, Kawasaki K, Tamaki H, Kitagawa W, Abe A, Tanaka M, Sone T, Asano K, Kamagata Y. (2018) Isolation of previously uncultured slow-growing microorganisms by using a simple modification in preparation of agar media. Appl. Environ. Microbiol. 84: e00807-18. [Pubmed]

45. Tanaka K, Yokoe S, Igarashi K, Takashino M, Ishikawa M, Hori K, Nakanishi S, *Kato S. (2018) Extracellular electron transfer via outer membrane cytochromes in a methanotrophic bacterium Methylococcus capsulatus (Bath). Front. Microbiol. 9: 2905. [Pubmed]

44. Ishikawa M, Yokoe S, Kato S, Kato S, Hori K. (2018) Efficient counterselection for Methylococcus capsulatus (Bath) by using a mutated pheS gene. Appl. Environ. Microbiol. 84: e01875-18. [Pubmed]

43. Sasaki K, Sasaki D, Kamiya K, Nakanishi S, Kondo A, *Kato S. (2018) Electrochemical biotechnologies minimizing the required electrode assemblies. Curr. Opin. Biotechnol. 50: 182-188. (Review article) [Pubmed]

2017

42. *Kato S, Kanata Y, Kitagawa W, Sone T, Asano K, Kamagata Y. (2017) Restoration of the growth of Escherichia coli under K+-deficient conditions by Cs+ incorporation via the K+ transporter Kup. Sci. Rep. 7: 1965. [Pubmed]

41. *Kato S. (2017) Influence of anode potentials on current generation and extracellular electron transfer paths of Geobacter species. Int. J. Mol. Sci. 18: 108. [Pubmed]

40. Igarashi K, *Kato S. (2017) Extracellular electron transfer in acetogenic bacteria and its application for conversion of carbon dioxide into organic compounds. Appl. Microbiol. Biotechnol. 101: 6301-6307. (Review article) [Pubmed]

39. Ishikawa M, Tanaka Y, Suzuki R, Kimura K, Tanaka K, Kamiya K, Ito H, Kato S, Kamachi T, Hori K, Nakanishi S. (2017) Real-time monitoring of intracellular redox changes in Methylococcus capsulatus (Bath) for efficient bioconversion of methane to methanol. Bioresour. Technol. 241: 1157-1161. [Pubmed]

38. Tanaka K, Kaneko M, Ishikawa M, Kato S, Ito H, Kamachi T, Kamiya K, Nakanishi S. (2017) Specific interaction between redox phospholipid polymers and plastoquinone in photosynthetic electron transport chain. ChemPhysChem. 18: 878-881. [Pubmed]

37. Kaneko M, Ishikawa M, Song J, Kato S, Hashimoto K, Nakanishi S. (2017) Cathodic supply of electrons to living microbial cells via cytocompatible redox-active polymers. Electrochem. Commun. 75: 17-20. [リンク]

2016

36. *Kato S, Goya E, Tanaka M, Kitagawa W, Kikuchi Y, Asano K, Kamagata Y. (2016) Enrichment and isolation of Flavobacterium strains with tolerance to high concentrations of cesium ion. Sci. Rep. 6: 20041. [Pubmed]

35. *Kato S. (2016) Microbial extracellular electron transfer and its relevance to iron corrosion. Microbial Biotechnol. 9: 141-148. (Review article) [Pubmed]

34. Terashima M, Yama A, Sato M, Yumoto I, Kamagata Y, *Kato S. (2016) Culture-dependent and -independent identification of polyphosphate-accumulating Dechloromonas spp. predominating in a full-scale oxidation ditch wastewater treatment plant. Microbes Environ. 31: 449-455. [Pubmed]

33. Song J, Sasaki D, Sasaki K, Kato S, Kondo A, Hashimoto K, Nakanishi S. (2016) Comprehensive metabolomic analyses of anode-respiring Geobacter sulfurreducens cells: the impact of anode-respiration activity on intracellular metabolite levels. Process Biochem. 51: 34-38. [リンク]

2015

32. *Kato S, Yumoto I, Kamagata Y. (2015) Isolation of acetogenic bacteria that induce biocorrosion by utilizing metallic iron as the sole electron donor. Appl. Environ. Microbiol. 81: 67-73. [Pubmed]
Appl Environ Microbio誌2015年81巻1号のSpotligh articleに選出

31. *Kato S, Chino K, Kamimura N, Masai E, Yumoto I, Kamagata Y. (2015) Methanogenic degradation of lignin-derived monoaromatic compounds by microbial enrichments from rice paddy field soil. Sci. Rep. 5: 14295. [Pubmed]

30. *Kato S. (2015) Biotechnological aspects of microbial extracellular electron transfer. Microbes Environ. 30: 133-139. (Review article) [Pubmed]

29. Yamada C, Kato S, Ueno Y, Ishii M, Igarashi Y. (2015) Conductive iron oxides accelerate thermophilic methanogenesis from acetate and propionate. J. Biosci. Bioeng. 119: 678-682. [Pubmed]

28. Nishio K, Pornpitra T, Izawa S, Nishiwaki-Ohkawa T, Kato S, Hashimoto K, Nakanishi S. (2015) Electrochemical detection of circadian redox rhythm in cyanobacterial cells via extracellular electron transfer. Plant Cell Physiol. 56: 1053-1058. [Pubmed]

27. Kouzuma A, Kato S, Watanabe K. (2015) Microbial interspecies interactions: recent findings in syntrophic consortia. Front. Microbiol. 6: 477. (Review article) [Pubmed]

2014

26. *Kato S, Yoshida R, Yamaguchi T, Sato T, Yumoto I, Kamagata Y. (2014) The effects of elevated CO2 concentration on competitive interaction between aceticlastic and syntrophic methanogenesis in a model microbial consortium. Front. Microbiol. 5: 575. [Pubmed]

25. *Kato S, Sasaki K, Watanabe K, Yumoto I, Kamagata Y. (2014) Physiological and transcriptomic analyses of a thermophilic, aceticlastic methanogen Methanosaeta thermophila responding to ammonia stress. Microbes Environ. 29: 162-167. [Pubmed]

24. Yamada C, Kato S, Kimura S, Ishii M, Igarashi Y. (2014) Reduction of Fe(III) oxides by phylogenetically and physiologically diverse thermophilic methanogens. FEMS Microbiol. Ecol. 89: 637-645. [Pubmed]

23. Yamada C, Kato S, Ueno Y, Ishii M, Igarashi Y. (2014) Inhibitory effects of ferrihydrite on a thermophilic methanogenic community. Microbes. Environ. 29: 227-230. [Pubmed]

22. Lu Y, Nishio K, Matsuda S, Toshima Y, Ito H, Konno T, Ishihara K, Kato S, Hashimoto K, Nakanishi S. (2014) Regulation of the cyanobacterial circadian clock by electrochemically controlled extracellular electron transfer. Angew. Chem. Int. Ed. 53: 2208-2211. [Pubmed]

21. Nishio K, Kimoto Y, Song J, Konno T, Ishihara K, Kato S, Hashimoto K, Nakanishi S. (2014) Extracellular electron transfer enhances polyhydroxybutyrate productivity in Ralstonia eutropha. Environ. Sci. Technol. Lett. 1: 40-43. [リンク]

2013

20. Kato S, Hashimoto K, Watanabe K. (2013) Iron-oxide minerals affect extracellular electron-transfer paths of Geobacter spp. Microbes Environ. 28: 141-148. [Pubmed]
“Microbes and Environments, JSME Prize 2014 for the best publication”を受賞

2012

19. Kato S, Hashimoto K, Watanabe K. (2012) Microbial interspecies electron transfer via electric currents through conductive minerals. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109: 10042-10046. [Pubmed][プレスリリース]

18. Kato S, Hashimoto K, Watanabe K. (2012) Methanogenesis facilitated by electric syntrophy via (semi)conductive iron-oxide minerals. Environ. Microbiol. 14: 1646-1654. [Pubmed]

2011

17. Matsuda S, Liu H, Kato S, Hashimoto K, Nakanishi S. (2011) Negative Faradaic resistance in extracellular electron transfer by anode-respiring Geobacter sulfurreducens cells. Environ. Sci. Technol. 45: 10163-10169. [Pubmed]

2010

16. Kato S, Nakamura R, Kai F, Watanabe K, Hashimoto K. (2010) Respiratory interactions of soil bacteria with (semi)conductive iron-oxide minerals. Environ. Microbiol. 12: 3114-3123. [Pubmed]

15. Kato S, Watanabe K. (2010) Ecological and evolutionary interactions in syntrophic methanogenic consortia. Microbes Environ. 25: 145-151. (Review article) [Pubmed]

14. Nakamura R, Takashima T, Kato S, Takai K, Yamamoto M, Hashimoto K. (2010) Electrical current generation across a black smoker chimney. Angew. Chem. Int. Ed. 49: 7692-7694. [Pubmed]

13. Yamamoto K, Haruta S, Kato S, Ishii M, Igarashi Y. (2010) Determinative factors of competitive advantage between aerobic bacteria for niches at the air-liquid interface. Microbes. Environ. 25: 317-320. [Pubmed]

12. Liu H, Matsuda S, Kato S, Hashimoto K, Nakanishi S. (2010) Redox-responsive switching in bacterial respiratory pathway involving extracellular electron transfer. ChemSusChem. 3: 1253-1256. [Pubmed]

11. Takanezawa K, Nishio K, Kato S, Hashimoto K, Watanabe K. (2010) Factors affecting electric output from rice paddy-field microbial fuel cells. Biosci. Biotechnol. Biochem. 74: 1271-1273. [Pubmed]

2009

10. Kato S, Kosaka T, Watanabe K. (2009) Substrate-dependent transcriptomic shifts in Pelotomaculum thermopropionicum grown in syntrophic co-culture with Methanothermobacter thermautotrophicus. Microbial Biotechnol. 2: 575-584. [Pubmed]

9. Kato S, Watanabe K. (2009) Analysis of gene transcripts in a crude oil-degrading marine microbial community. Biosci. Biotechnol. Biochem. 73: 1665-1668. [Pubmed]

8. Shimoyama T, Kato S, Ishii S, Watanabe K. (2009) Flagellum mediates symbiosis. Science. 323: 1574. [Pubmed]

7. Haruta S, Kato S, Yamamoto K, Igarashi Y. (2009) Intertwined interspecies relationships: approaches to untangle the microbial network. Environ. Microbiol. 11: 2963-2969. (Review article) [Pubmed]

2008

6. Kato S, Kosaka T, Watanabe K. (2008) Comparative transcriptome analysis of responses of Methanothermobacter thermautotrophicus to different environmental stimuli. Environ. Microbiol. 10: 893-905. [Pubmed]

5. Kato S, Haruta S, Cui ZJ, Ishii M, Igarashi Y. (2008) Network relationships of bacteria in a stable mixed culture. Microbial Ecol. 56: 403-411. [Pubmed]

4. Kosaka T, Kato S, Shimoyama T, Ishii S, Abe T, Watanabe K. (2008) The genome of Pelotomaculum thermopropionicum reveals niche-associated evolution in anaerobic microbiota. Genome Res. 18: 442-448. [Pubmed]

2005

3. Kato S, Haruta S, Cui ZJ, Ishii M, Igarashi Y. (2005) Stable coexistence of five bacterial strains as a cellulose-degrading community. Appl. Environ. Microbiol. 71: 7099-7106. [Pubmed]

2004

2. Kato S, Haruta S, Cui ZJ, Ishii M, Igarashi Y. (2004) Effective cellulose degradation by a mixed-culture system composed of a cellulolytic Clostridium and aerobic non-cellulolytic bacteria. FEMS Microbiol. Ecol. 51: 133-142. [Pubmed]

1. Kato S, Haruta S, Cui ZJ, Ishii M, Yokota A, Igarashi Y. (2004) Clostridium straminisolvens sp. nov., a moderately thermophilic, aerotolerant and cellulolytic bacterium isolated from a cellulose-degrading bacterial community. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 54: 2043-2047. [Pubmed]

Book chapters, Proceedings

  1. *Kato S. Electrochemical interactions between microorganisms and conductive particles. In Ishii M., Wakai S. (eds.), Electron-Based Bioscience and Biotechnology. (2020) Springer, pp. 73-80.
  2. Nishio K, Kouzuma A, Kato S, Watanabe K. Energy from slime? Power from microbial fuel cells. In Lear G., Lewis G. (eds.), Microbial Biofilms, Current Research and Applications. (2011) Caister Academic Press. Norfolk, UK. pp.175-192.
  3. Kato S, Haruta S, Cui ZJ, Ishii M, Igarashi Y. Effective cellulose degradation by cellulolytic Clostridia together with aerobic non-cellulolytic bacteria. In Ohmiya K., Sakka K., Karita S., Kimura T., Sakka M., Onishi Y. (eds.), Biotechnology of lignocellulose degradation and biomass utilization. (2004) Uni Publishers, Tokyo, japan. pp. 841-846.

和文総説、著書

  1. 加藤創一郎. サイエンティストは電気微生物の夢を見るか？ 極限環境生物学会誌 (2024) 22: 9-12.
  2. 加藤創一郎. 電気化学活性を持つ微生物の生理・生態学的解析とその応用利用. バイオサイエンスとインダストリー (2024) 82: 346-347.
  3. 田畑裕、加藤創一郎、中西周次. バイオ生産の原料となる糖の高速化学合成. バイオサイエンスとインダストリー (2024) 82: 289-291.
  4. 加藤創一郎. Biomass 4.0：微生物による脱光合成型CO2資源化技術の可能性. 微生物生態学会和文誌 (2024) 39: 14-21. [PDF]
  5. 加藤創一郎、五十嵐健輔. 酢酸生成菌によるCO2資源化. 独立栄養細菌によるCO2資源化技術（シーエムシー出版）(2023) pp. 134-141. [書籍情報]
  6. 加藤創一郎. 電気エネルギーを利用し大気CO2を固定するバイオプロセスの研究開発. CO2の分離・回収・貯留技術の開発とプロセス設計（技術情報協会） (2022) [書籍情報]
  7. 加藤創一郎. 遺伝子ドーピングによる希少系統群微生物の革新的分離培養法の構築. IFO Research Communications (2021) 35: 3-10.
  8. 加藤創一郎.  電気共生のメカニズムと応用. 微生物を用いた発電および水素生産（シーエムシー出版）(2021) pp. 32-38. [書籍情報]　
  9. 加藤創一郎. 電気を使って生きる微生物. モダンメディア (2021) 67: 483-487. [PDF]
  10. 田中謙也、石川聖人、田畑裕、加藤創一郎、中西周次. シアノバクテリアにおける光不応答性の概日レドックスリズムと抗酸化機能. 時間生物学 (2018) 24: 204.
  11. 加藤創一郎. 電気を食べる微生物が引き起こす鉄腐食. バイオサイエンスとインダストリー (2016) 74: 522-523.
  12. 加藤創一郎. 酸素の要らない「酢酸生成菌」の世界. 生物工学会誌 (2016) 94: 744. [PDF]
  13. 加藤創一郎. 微生物間の電子移動に基づく共生. 難培養微生物研究の最新技術III -微生物の生き様に迫り課題解決へ- (2015)（シーエムシー出版）pp. 155-162. [書籍情報]
  14. 北川航、加藤創一郎、菊池義智、田中みち子、鎌形洋一. 新規放線菌Tomitella biformataに休眠と覚醒をもたらす条件の解明. IFO Research Communications. (2015) 29: 59-75.
  15. 鎌形洋一、田中みち子、北川航、菊池義智、加藤創一郎. 寒天培養における微生物の生育手法の問題点に関する解析. IFO Research Communications. (2015) 29: 77-84.
  16. 加藤創一郎. 鉄で呼吸する. 環境と微生物の事典 (2014)（朝倉書店）pp. 80-81. [書籍情報]
  17. 加藤創一郎. 細胞外電子伝達：固体を呼吸基質とする微生物たち. 微生物生態学会和文誌 (2014) 29: 65-75. [PDF]
  18. 加藤創一郎. 細菌のエネルギー代謝メカニズムと電気共生. 微生物燃料電池による廃水処理システム最前線 (2013)（株式会社エヌ・ティー・エス）pp. 56-65. [書籍情報]
  19. 加藤創一郎. 微生物の電気共生：微生物と鉱物からなる送電網. バイオサイエンスとインダストリー (2013) 71: 237-238.
  20. 渡邉一哉、加藤創一郎. 微生物の電気共生 -微生物と鉱物がつくる土の中のミクロな送電網-. 現代化学 (2013) 502: 44-49.
  21. 加藤創一郎、渡邉一哉. メタン発酵共生系の進化と生存戦略. 化学と生物 (2009) 47:253-260. [PDF]
  22. 加藤創一郎. 遺伝子発現に基づいたメタゲノムの解析・利用技術. マリンメタゲノムの有効利用 (2009)（シーエムシー出版）pp. 3-13.
  23. 下山武文、加藤創一郎、渡邉一哉. メタゲノムアプローチの新規手法. 環境バイオテクノロジー学会誌 (2007) 7: 79-86.
  24. 春田伸、加藤創一郎、崔宗均、石井正治、五十嵐泰夫. 嫌気、好気微生物の混合培養による効率的有機物分解. 環境バイオテクノロジー学会誌 (2005) 5: 91-96.

招待講演

国際学会・シンポジウム

  1. Kato S. Microbial anaerobic metabolisms for bioproduction and energy conversion technologies. Materials Research Meeting 2021 (MRM2021) (Pacifico Yokohama, Japan, 2021 12/14)
  2. Kato S. Carbon recycling technologies based on microbial electrochemistry. Moonshot International Symposium (Tokyo, Japan, 2019 12/18)
  3. Kato S. Microbial metabolisms based on electron exchange with solid materials. The 3rd Solar Fuel Material workshop (Osaka Univ., Japan, 2018 3/13)
  4. Kato S. Microbial energy metabolisms based on electrochemical interaction with solid surfaces. IGER International Symposium on Cell Surface Structures and Functions 2017 (Nagoya Univ., Japan, 2017 12/1)
  5. Kato S. Electric syntrophy: Syntrophic methanogenesis via electric current through conductive materials. 2017 Anaerobic Microbial Syntrophy Forum (Chengdu, China, 2017 10/25)
  6. Kato S. Acetogenic bacteria that induce biocorrosion via extracellular electron transfer. 6th International Symposium on Applied Microbiology and Molecular Biology in Oil Systems (ISMOS-6) (San Diego, US, 2017 6/6-9)
  7. Kato S. Electron exchange between microorganisms and conductive minerals. Goldschmidt conference 2014 (Sacramento, US, 2014 6/8-13)
  8. Kato S. Getting wired with your partner: Microbial interspecies electron transfer through nanoparticles of conductive minerals. Microbial nanotechnology and nanomaterials in JK-ISME (Toyohashi Univ. of Technology, Japan, 2012 9/22)

国内学会・シンポジウム・セミナー等

  1. 加藤創一郎. 触媒合成される非天然有機物の微生物代謝. JST ACT-X環境とバイオテクノロジー分科会（北海道大学、2024 8/5）
  2. 加藤創一郎. 二酸化炭素資源化におけるマテリアル・バイオ技術融合の重要性と微生物による新規バイオ技術の最先端および展望. サイエンス＆テクノロジーセミナー（オンライン、2024 4/26）
  3. 加藤創一郎. 微生物代謝×材料科学で光合成を超える. 公益財団法人大隅基礎科学創成財団　微生物機能探究コンソーシアム定例会（オンライン、2024 4/10）
  4. 加藤創一郎. 電気化学活性を持つ微生物の生理・生態学的解析とその応用. バイオインダストリー協会シンポジウム　動き出したバイオものづくり～微生物の無限の可能性を活用する～（オンライン、2024 2/21）
  5. 加藤創一郎. 脱光合成型のCO2資源化バイオ技術の可能性. 新化学技術推進協会　ライフサイエンス技術部会反応分科会講演会（新化学技術推進協会、2024 1/31）
  6. 加藤創一郎. 非光合成微生物によるCO2の固定化とその応用. 技術情報協会セミナー　CO2固定微生物の種類、特徴と有用物質生産への活用（オンライン、2024 1/15）
  7. 加藤創一郎. 電気をエネルギー源とした二酸化炭素資源化バイオ技術. 日本微生物生態学会 第36回大会（アクトシティ浜松コングレスセンター、2023 11/30）
  8. 加藤創一郎. 微生物電気化学を活用したCO2資源化技術. 資源生物変換研究会シンポジウム（第75回日本生物工学会大会シンポジウム） 「微生物炭素固定代謝の多様性に基づく合成生物学」（名古屋大学、2023 9/4）
  9. 加藤創一郎. 発電微生物は自然環境でも発電しているのか？ 2023年度 極限環境生物学会 第24回年会（北見工業大学、2023 8/29）
  10. 加藤創一郎. 脱光合成型バイオCO2資源化技術の可能性. 日本生物工学会　創立100周年記念シンポジウム 生物工学の未来（2050年）第3回 ―バイオものづくりで未来のエネルギーと環境を考える―（オンライン、2023 7/6）
  11. 加藤創一郎. 微生物電気化学を活用した二酸化炭素資源化技術. 第60回日本生物物理学会年会（函館アリーナ、2022 9/30）
  12. 加藤創一郎. 電力等をエネルギー源とする非光合成微生物を用いた二酸化炭素資源化技術. バイオ技術によるCO2有効利用／カーボンリサイクルの研究開発と取組み動向（オンライン、2022 8/23）
  13. 加藤創一郎. 微生物を利用した二酸化炭素資源化技術と今後の可能性. 日本計画研究所（JPI）セミナー（JPIカンファレンススクエア、2022 7/19）
  14. 加藤創一郎. 微生物利用CO2資源化技術. LS-BT講演会（オンライン、2022 6/29）
  15. 加藤創一郎. 微生物を利用した二酸化炭素資源化技術の現状、および新技術の概要や展望. CMCリサーチウェビナー（オンライン、2022 6/3）
  16. 加藤創一郎. 微生物電気化学を活用したバイオガス生産の高効率化技術. 日本微生物生態学会第34回大会（オンライン、2021 11/1）
  17. 加藤創一郎. バイオ・マテリアルの融合によるCO2資源化技術. BioJAPAN 2021 JBA主催者セミナー（パシフィコ横浜、2021 10/14）
  18. 加藤創一郎. 微生物電気化学を利用した二酸化炭素固定技術. 2021年電気化学秋季大会（オンライン、2021 9/8）
  19. 加藤創一郎. 微生物電気化学を利用したエネルギー変換・CO2資源化技術. 産総研フレキシブルエネルギーデバイスコンソーシアム第2回研究会（オンライン、2021 8/27）
  20. 加藤創一郎. 培養困難な微生物たちとそれらを培養したい研究者たち. 第67 回日本放線菌学会学術講演会（オンライン、2021 3/9）
  21. 加藤創一郎. 電気をつくる・たべる微生物 -バイオと材料科学のインターフェイス-. ナノ・バイオ融合による光駆動型物質生産へのアプローチ（岡山大学、2020 2/1）
  22. 加藤創一郎, 中村龍平. 無機材料と微生物のハイブリッドによる未利用エネルギー変換システム. 理研・産総研　第2回合同シンポジウム（イイノカンファレンスセンター、2020 1/14）
  23. 加藤創一郎. 電気共生型メタン生成を利用した有機性廃棄物の高効率バイオガス化技術の開発. 循環型社会形成推進研究発表会（連合会館、2018 12/26）
  24. 加藤創一郎. セシウム（Cs）を取り込む微生物. 環境微生物系学会合同大会（東北大学川内北キャンパス、2017 8/30）
  25. 加藤創一郎. 導電性粒子との電子授受にもとづく微生物のエネルギー代謝. 異分野融合シンポジウム「微生物を基軸とした環境と電気と金属」（東京工業大学、2017 7/10）
  26. 加藤創一郎, 北川航, 菅野学, 玉木秀幸. 放線菌の休眠と覚醒をめぐる新たなメカニズム. 第90回日本細菌学会総会（仙台国際センター、2017 3/20）
  27. 加藤創一郎. 電気共生：導電性粒子を介した異種微生物間電子授受反応. 超循環型社会の創出に向けた微生物電気化学イノベーションワークショップ（東京大学、2016 7/20）
  28. 加藤創一郎. 固体で呼吸する微生物とそのバイオテクノロジー. 平成27年度資源・素材フォーラム（北海道大学、2015 12/11）
  29. 加藤創一郎. 微生物生態系の理解に向けた構成的アプローチ. 細胞を創る研究会8.0（大阪大学吹田キャンパス、2015 11/13）
  30. 加藤創一郎. メタン生成アーキアと細胞外電子伝達. 日本微生物生態学会第30回大会（土浦亀城プラザ、2015 10/19）
  31. 加藤創一郎. 導電性鉄鉱物との電子授受に基づく微生物代謝. 2015年度日本地球化学会第62回年会（横浜国立大、2015 9/17）
  32. 加藤創一郎. 微生物・固体間電子移動に基づく酢酸生成反応とその鉄腐食への関与. 日本農芸化学会2015年度岡山大会（岡山大学、2015 3/29）
  33. 加藤創一郎. 微生物細胞外電子伝達と金属腐食との関わり. 微生物が促進する鉄鋼材料の腐食フォーラム（日本鉄鋼協会 材料の組織と特性部会）（秋田大学、2014 12/8）
  34. 加藤創一郎, 橋本和仁, 渡邊一哉. 導電性鉄鉱物が電流産生微生物の細胞外電子伝達経路に与える影響. 環境微生物系合同大会2014（アクトシティ浜松コングレスセンター、2014 10/22）
  35. 加藤創一郎. 細胞外電子伝達の生態学的意義とは？　-導電性鉱物と電子をやりとりする微生物-. 環境微生物系合同大会2014（アクトシティ浜松コングレスセンター、2014 10/22）
  36. 加藤創一郎. 電気をたべる微生物・電気をつくる微生物. 日本微生物生態学会第26回大会 嫌気性界の微生物生態研究部会（筑波大学、2010 11/24）

外部予算獲得

公的機関

  1. JST・未来社会創造事業（2022-, 分担）「化学合成糖を利用する有用有機物の高速バイオ生産」
  2. 科研費・学術変革領域A・計画班（2022-, 分担）「CO環境で成立する生物圏の解明」
  3. 科研費・基盤研究B（2022-, 代表）「細菌細胞壁を分解・資化する嫌気性微生物の同定と分離培養」
  4. NEDO・ムーンショット型研究開発事業（2020-2022, 代表）「電気エネルギーを利用し大気CO2を固定するバイオプロセスの研究開発」
  5. 科研費・新学術領域研究・公募班（2020-2021, 代表）「機能遺伝子の人為的導入による未知微生物の培養化」
  6. 科研費・挑戦的研究（萌芽）（2019-2020, 代表）「低水素供給培養法を利用した低エネルギー環境からの未知メタン生成菌の分離」
  7. 内閣府・戦略的イノベーション創造プログラム（SIP）（2018-2020, 分担・班代表）「革新的バイオ素材・高機能品等の開発を加速するインフォマティクス基盤技術の開発」
  8. 科研費・若手A（2016-2018, 代表）「導電性鉱物を介した電気共生型メタン生成の分子機構および実環境における寄与の解明」
  9. 科研費・挑戦的萌芽研究（2016-2017, 代表）「金属鉄を唯一のエネルギー源として生育する鉄腐食・酢酸生成菌の代謝機構の解明」
  10. 環境省・環境研究総合推進費（2016-2017, 代表）「電気共生型メタン生成を利用した有機性廃棄物の高効率バイオガス化技術の開発」
  11. 科研費・新学術領域研究・公募班（2015-2016, 代表）「鉱物との電子授受にもとづく微生物酢酸生成代謝が生命初期進化に果たした役割を探る」
  12. 科研費・挑戦的萌芽研究（2014-2015, 代表）「暗所に生きる細菌に体内時計は必要か？」
  13. 科研費・研究活動スタート支援（2012-2013, 代表）「モデル微生物共生系を用いた酢酸分解メタン生成機構の解明」

財団等

  1. 公益財団法人発酵研究所・大型研究助成（2019-2020, 代表）
    「遺伝子ドーピングによる希少系統群微生物の革新的分離培養法の構築」
  2. 公益財団法人発酵研究所・一般研究助成（2016-2017, 代表）
    「カリウム輸送タンパクの人工進化によるセシウム蓄積微生物の創出」
  3. 公益財団法人加藤記念バイオサイエンス振興財団・第26回研究助成（2015-2016, 代表）
    「深部地下圏での微生物電気共生による原油分解メタン生成の実証と機構解明」
  4. 財団法人農芸化学研究奨励会・国際会議出席費補助金（2004）
  5. 公益財団法人加藤記念バイオサイエンス振興財団・国際交流助成（2003）